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Comunicaciones orales

103

dent, cambios estadísticamente significativos en el nivel de

AD

(media pre-tratamiento 67, post-tratamiento 81,07 p = 0,006),

GI

(13,93

vs

. 23,29,

p = 0,000),

EE: A

(14,21

vs.

7,43, p = 0,001),

D

(10,57

vs.

4,93, p = 0,006),

SE

(16,57

vs.

23,71, p = 0,000),

IE

(3,29

vs.

2,14, p = 0,003),

AS

(62,50

vs.

72,14, p = 0,005),

LCI

(14,21

vs.

26,86, p = 0,000 ),

AE

(60,57

vs.

98,64, p = 0,001) y

CV

(49,64

vs.

67,50, p = 0,007).

Conclusiones:

La adherencia a la profilaxis reduce sangrados

y está asociada a CV, resultando de crítica importancia desarrollar

programas para promocionarla. La TCC ha provocado cambios

en variables clínicas relevantes:

adherencia, conocimiento sobre

la enfermedad, estado emocional, interferencia en la vida diaria,

apoyo social, creencias promotoras del autocuidado y CV,

resul-

tados preliminares que alientan a su uso en PcHG.

Financiación: Novo Nordisk HERO Research Grant 2014.

CO-150

 Diagnóstico preciso de hemofilia A y

enfermedad de Von Willebrand mediante

secuenciación masiva de los genes

F8

y

VWF,

relevancia de las variantes intrónicas

Bastida J. M. (1), González-Porras J. R. (2), Jiménez C. (2), Benito

R. (2), Ordóñez G. R. (3), Álvarez-Román M. T. (4), Janusz K. (2),

Fontecha M. E. (5), Castillo D. (3), Fisac R. (6), García-Frade L.

J. (5), Aguilar C. (7), Martínez-Badás M. P. (8), Bermejo N. (9),

Herrero S. (10), Balanzategui A. (1), Martín-Antorán J. M. (11),

Cebeiro M. J. (12), Aguilera C. (13), Prieto M. (14), Jiménez-Yuste

V. (4), Hernández-Rivas J. M. (4), García-Sanz R. (4), González-

Díaz M. (4), Sarasquete M. E. (4)

(1) Hospital Universitario de Salamanca, IBSAL. Salamanca. (2) Instituto de

Investigación Biomédica de Salamanca-IBSAL. Centro de Investigación Cáncer-

CIC. Hospital Universitario de Salamanca. Salamanca. (3) DREAMgenics S. L.

Oviedo, Asturias. (4) Unidad de Hemofilia. IDI-PAZ. Hospital Universitario La Paz.

Madrid. (5) Hospital Universitario Río Hortega. Valladolid. (6) Hospital General.

Segovia. (7) Complejo Asistencial de Soria. Soria. (8) Complejo Asistencial

de Ávila. Ávila. (9) Hospital San Pedro de Alcántara. Cáceres. (10) Hospital

General. Guadalajara. (11) Hospital Río Carrión. Palencia. (12) Hospital Clínico

Universitario de Valladolid. Valladolid. (13) Hospital de El Bierzo. Ponferrada,

León. (14) Complejo Asistencial de Burgos. Burgos

Introducción:

La caracterización molecular de la hemofi-

lia A (HA) es necesaria para confirmar su diagnóstico, establecer

el estado de portadora, diferenciarla de la enfermedad de Von Wi-

lledrand (EVW) y detectar el riesgo para desarrollar inhibidores.

En los casos de HA moderada y leve se lleva a cabo mediante la

secuenciación (Sanger) directa de los exones. Este método, caro

y laborioso, falla hasta en el 10% de los casos. Las variantes ge-

néticas causantes de la HA se distribuyen de forma heterogénea

por todo el gen, siendo más del 70%

missense/nonsense

e

InDels

.

Solo el 3% afecta a las regiones del

splicing

. Por otra parte, se

ha descrito, recientemente, la presencia de variantes genéticas en

regiones profundas intrónicas potencialmente involucradas en la

etiopatogenia de la HA. Además, pacientes con niveles descen-

didos de FVIII sin mutaciones en el gen

F8

, pueden presentar

variantes genéticas patogénicas en el gen

VWF

.

Material y métodos:

Un total de 60 casos (58 varones y

2 portadoras sintomáticas o con niveles descendidos de FVIII y de

las que desconocíamos la variante patogénica) fueron analizados

mediante la tecnología de Next-generation sequencing (NGS). Se

secuenciaron todas las regiones codificantes, intrónicas, promo-

toras y reguladoras de los genes

F8

y

VWF

mediante captura de

secuencia en una plataforma de MiSeq

®

(Illumina). Las variantes

genéticas identificadas se analizaron utilizando el software

Va-

riantStudio

(v2.2) e

Integrative Genomics Viewer.

Se utilizaron

programas bioinformáticos para predecir la patogenicidad de las

regiones intrónicas/splicing (DREAMgenics) y se recalificaron

según las últimas guías publicadas.

Resultados:

El 90,5% de las regiones se capturaron con una

profundidad de lectura de 641x y una cobertura media de al me-

nos 50x. Se identificaron 500 variantes/muestra, de media. En el

98% (59/60) de las muestras se detectó la variante genética cau-

sante de la deficiencia de FVIII: en 47 muestras afectó a la región

codificante de

F8

, en 8 a los exones de

VWF

y en 4 a las regiones

intrónicas en

F8

(Tabla 1)

. En relación con las variantes intró-

nicas, en tres pacientes no relacionados detectamos la variante

c.1010-842G > A en el intrón 7 y en el cuarto caso en el intrón

18 (c.5999-740T > C). El análisis de cosegregación de dichas va-

riantes fue concordante con la herencia de la HA. En 8 casos se

identificó una variante patogénica en

VWF

, recodificando el diag-

nóstico final

(Tabla 2)

. La variante c.2561G > A en el exón 20 del

gen

VWF

fue la más recurrente (4/8 50%). Solo en una caso se

identificó una variante probablemente benigna (c.2365ª > G) que

no permitió establecer un diagnóstico definitivo.

Conclusión:

El análisis simultáneo y completo de los genes

VWF

y

F8

permite la correcta caracterización molecular y diag-

nóstica de los pacientes con deficiencia de FVIII de una forma

rápida y costo-efectiva. Estudios funcionales y/o celulares son

necesarios para confirmar la patogenicidad de las variantes in-

trónicas.

Financiación: Este trabajo ha sido promovido por el IBSAL

e INNOCAMPUS y está financiado con una beca independiente

de Pfizer.